Біологічний мікроскоп на об'єм тканинного блоку
Біологічний мікроскоп із конденсором може переміщувати конденсор вгору та вниз, щоб зробити його яскравість помірною, а також може змінювати апертуру аналізатора змінного світла, щоб досягти помірної яскравості 9b. Якщо світло потрапляє на сонце, конденсор можна відповідно підняти, а апертуру змінного оптичного шуму можна відповідно збільшити. Якщо світло занадто сильне, конденсор можна відповідно опустити, а апертуру перехрестя можна відповідно зменшити. Якщо в цьому випадку ви все ще почуваєтеся сліпуче, ви можете вибрати відповідний фільтр і встановити його на кронштейн під конденсатором. Ця туса може отримати яскравість, яка вас задовольняє. Звичайно, необхідно отримати досвід після певного періоду практики в регулюванні верхнього і нижнього положень конденсора для зміни розміру апертури оптичного зчитування і вибору відповідних фільтрів.
Дуже важливою проблемою біомікроскопа є те, що вміст 65 елементів у кожній частині після сублімаційної сушки та заливання смоли (FD) і сублімаційної сушки необхідно ретельно обробляти, щоб не пошкодити клітини, які слід спостерігати та аналізувати. Оскільки рентгенівський мікроаналіз включає не тільки багато етапів, але й коштує багато, дуже прикро робити неправильний висновок, якщо проаналізовані клітини є пошкодженими клітинами або мертвими клітинами після тривалого та багатоетапного лікування. Наприклад, клітини міокарда, розділені обробкою колагеназою, мають дві форми: одна довга паличка, а інша кругла. Остання являє собою відмирає клітину, яка пошкоджується під час відділення клітини.
Вміст і розподіл електролітів у цих двох типах клітин дуже відрізняються під біологічним мікроскопом. У круглих клітинах міокарда Na дуже високий, а K дуже низький, а в лінійних дендритах концентрація Ca дуже висока. Порівняно з іншими аналітичними методами доведено, що високий Na та низький K у циркулярних клітинах і високий ca у мітохондріях є результатом пошкодження клітинної мембрани під час поділу клітин. Метод холодної фіксації клітин і тканин часто полягає в їх фіксації спочатку загартовуванням, а потім у зберіганні в рідкому азоті. Для ефекту консервації дуже важлива гартівна фіксація. Живі клітини або свіжі тканини багаті водою. При гарті часто буває так, що частини клітин або тканин, які безпосередньо контактують з кріопротекторами (особливо при гарті рідким азотом), спочатку заморожують і фіксують, утворюючи таким чином «оболонку», яка перешкоджає заморожуванню і фіксації центральної частина клітин. Тому при проведенні рентгенівського мікроаналізу часто виявляється, що в центрі більших клітин є кристали льоду. Щоб цього не сталося, в якості охолоджувача використовується речовина з температурою плавлення, вищою, ніж у рідкого азоту, але температурою сушіння, нижчою за 80°С. Існує багато таких речовин, але найлегшою з них є концентрований пропан (температура кипіння-42．120c, температура плавлення-187．10c, молекулярна маса-44.1), який має найшвидша швидкість охолодження. Але його недоліком є горючість.
Біологічний мікроскоп може помістити м’язове волокно на спеціальну раму, і коли м’язове волокно скорочується до певної фази та потребує фіксації, сопло запускається негайно, щоб рідкий пропан розпорошувався на м’язове волокно для гасіння та фіксації. це. Потім м'язові волокна виймають разом зі стійкою і поміщають в рідкий азот. Якщо клітини крові або відокремлені клітини фіксовані, спочатку відцентрифугуйте на низькій швидкості, щоб сконцентрувати клітини, перемістіть клітини в срібну невелику пробірку з хорошою теплопровідністю та помістіть невелику пробірку в рідкий пропан для заморожування та фіксації. При фіксації підшлункової залози щура в лабораторії Холла два сталевих блоки попередньо охолоджували рідким гелієм (або рідким азотом), а два мідні блоки розміщували плоскогубцями перед і позаду підшлункової залози, щоб тітки були загартовані і зафіксовані. Тканина або клітини можуть зберігатися тривалий час після гасіння та фіксації та перенесення в рідкий азот.
